La estructura cristalina de la proteasa principal del
SARS-CoV-2 proporciona una base para el diseño de inhibidores mejorados de
α-cetoamida
Linlin Zhang 1, 2, Daizong Lin
1,
3, Xinyuanyuan
Sun
1,
2, Ute Curth
4, Christian
Drosten
5 , Lucie Sauerhering
6 ,
7 , Stephan
Becker
6 ,
7 , Katharina Rox
8 ,
9 , Rolf Hilgenfeld
1 ,
2 ,
*
Science 20 Mar 2020: eabb3405 DOI: 10.1126 / science.abb3405
Este es un artículo de acceso abierto
distribuido bajo los términos de la licencia
Creative Commons Attribution , que
permite el uso, la distribución y la reproducción sin restricciones en
cualquier medio, siempre que el trabajo original se cite correctamente.
Resumen
La pandemia de COVID-19
causada por el SARS-CoV-2 es una emergencia de salud global. Un objetivo
farmacológico atractivo entre los coronavirus es la proteasa principal (M pro , 3CL pro), debido a su papel
esencial en el procesamiento de las poliproteínas que se traducen del ARN
viral. Divulgamos las estructuras de rayos X del SARS-CoV-2 M pro no ligado y su
complejo con un inhibidor de α-cetoamida. Esto se derivó de un inhibidor
previamente diseñado pero con el enlace amida P3-P2 incorporado en un anillo de
piridona para mejorar la vida media del compuesto en plasma. Según la
estructura, desarrollamos el compuesto principal en un potente inhibidor del
SARS-CoV-2 M pro. La caracterización farmacocinética del
inhibidor optimizado revela un pronunciado tropismo pulmonar y la idoneidad
para la administración por vía inhalatoria.
En diciembre de 2019, un nuevo coronavirus causó un brote de
enfermedad pulmonar en la ciudad de Wuhan, capital de la provincia de Hubei en
China, y desde entonces se ha extendido a nivel mundial (
1 ,
2 ). El virus se ha denominado SARS-CoV-2
(
3 ), porque el genoma de ARN es aproximadamente
un 82% idéntico al coronavirus del SARS (SARS-CoV); ambos virus pertenecen
al clado b del género
Betacoronavirus (
1 ,
2) La enfermedad causada por el SARS-CoV-2 se
llama COVID-19. Mientras que al comienzo del brote, los casos estaban
relacionados con el mercado de mariscos y animales de Huanan en Wuhan, la
transmisión eficiente de persona a persona condujo a un crecimiento exponencial
en el número de casos. El 11 de marzo, la Organización Mundial de la Salud
(OMS) declaró el brote como una pandemia. A partir del 15 de marzo,
hay> 170,000 casos acumulados a nivel mundial, con una tasa de letalidad de
~ 3.7%.
Uno de los objetivos farmacológicos mejor caracterizados
entre los coronavirus es la proteasa principal (M
pro, también llamada 3CL
pro) (
4). Junto con la (s) proteasa (s) tipo papaína,
esta enzima es esencial para procesar las poliproteínas que se traducen del ARN
viral (
5)
. El M
pro opera
en no menos de 11 sitios de escisión en la poliproteína grande 1ab (replicasa
1ab, ~ 790 kDa); la secuencia de reconocimiento en la mayoría de los
sitios es Leu-Gln ↓ (Ser, Ala, Gly) (↓ marca el sitio de
escisión). Inhibir la actividad de esta enzima bloquearía la replicación
viral. Como no se conocen proteasas humanas con una especificidad de
escisión similar, es improbable que los inhibidores sean tóxicos.
Anteriormente, diseñamos y sintetizamos α-cetoamidas
peptidomiméticas como inhibidores de amplio espectro de las principales
proteasas de betacoronavirus y alfacoronavirus, así como las proteasas 3C de
enterovirus (
6). El mejor de estos compuestos (
11r ;
Fig. 1) mostró una
CE
50de 400 picomolar
contra MERS-CoV en células Huh7, así como valores bajos de EC
50 micromolar contra SARS-CoV y
una gama completa de enterovirus en varias líneas celulares, aunque La
actividad antiviral parecía depender en gran medida del tipo de célula utilizada
en los experimentos (
6). Para mejorar la vida media del compuesto en
plasma, modificamos
11r ocultando el enlace amida P3 - P2 dentro de
un anillo de piridona (
Fig. 1, círculos
verdes), con la expectativa de que esto podría evitar que las proteasas
celulares accedan a este enlace y lo rompan. Además, para aumentar la
solubilidad del compuesto en plasma y reducir su unión a las proteínas
plasmáticas, reemplazamos el resto cinnamoil hidrófobo por el grupo Boc algo
menos hidrófobo (
Fig. 1, círculos
rojos) para dar
13a (ver esquema S1 para síntesis)
![](https://blogger.googleusercontent.com/img/b/R29vZ2xl/AVvXsEhtzxW4BcvOUCOpUQPKhNkfvIaUopxRJafUfSnVkSb2JDo7su5nLT-6owpvqmtX-t2wasS0iDztAGJxDMQLZmMSflKUFbg2y8yLH09rGJP8Xp473h1qYJ3SMktzuuXhX-tiImnXRPTu3RFa/s400/Coronavirus+fig.+1.jpg) |
Fig. 1 Estructuras químicas de los inhibidores de α-cetoamida 11r, 13a, 13b y 14b.
Los círculos de colores resaltan las modificaciones de un paso del desarrollo al siguiente (ver texto).
Para examinar si el anillo de
piridona introducido es compatible con la estructura tridimensional del
objetivo, determinamos la estructura cristalina, con una resolución de 1.75 Å,
del M pro de SARS-CoV-2 (Fig. 2). La estructura tridimensional es muy similar a
la del SARS-CoV M pro , como se esperaba
de la identidad de secuencia del 96% (véase la figura S7); la desviación
rms entre las dos estructuras de enzimas libres es de 0.53 Å para todas las
posiciones Cα (comparación entre la estructura SARS-CoV-2 M pro y la SARS-CoV M pro , entrada PDB 2BX4 (7)). Los
dominios similares a proteasas 3C y quimotripsina y picornavirus 3C (residuos
10-99 y 100-182, respectivamente) son barriles β antiparalelos de seis cadenas
que albergan el sitio de unión al sustrato entre ellos. El dominio III
(residuos 198-303), un cúmulo globular de cinco hélices, está involucrado en la
regulación de la dimerización del M pro,
principalmente a través de una interacción puente salino entre Glu 290 de un protómero y Arg 4 del otro (8). El
dímero ajustado formado por SARS-CoV-2 M pro tiene una interfaz de contacto,
predominantemente entre el dominio II de una molécula y el NH 2 residuos-terminal ( “N-dedo”) de la molécula de B, de ~ 1394
Å 2, con las dos moléculas orientadas perpendicularmente
entre sí (Fig. 2). La dimerización de la enzima es necesaria para
la actividad catalítica, porque el dedo N de cada uno de los dos protómeros
interactúa con Glu 166 del otro protómero
y, por lo tanto, ayuda a formar la bolsa S1 del sitio de unión al sustrato (9). Para
alcanzar este sitio de interacción, el dedo N se comprime entre los dominios II
y III del monómero original y el dominio II del otro
monómero. Curiosamente, en el SARS-CoV pero no en el dímero
de SARS-CoV-2 M pro, hay una interacción
polar entre los dos dominios III que implica un enlace de hidrógeno de 2.60 Å
entre los grupos hidroxilo de cadena lateral del residuo Thr 285de cada protómero, y soportado por un contacto
hidrófobo entre la cadena lateral de Ile 286 y Thr 285 Cγ2. En
SARS-CoV-2, la treonina se reemplaza por alanina (indicada por la esfera negra
en la Fig. 2), y la isoleucina por leucina (ver Fig. S7). Se
ha demostrado previamente que la sustitución de Ser 284, Thr 285 e
Ile 286 por residuos de alanina en SARS-CoV M pro conduce a una mejora de 3.6 veces de la
actividad catalítica de la proteasa, concomitante con un empaquetamiento
ligeramente más cercano de los dos dominios. III del dímero uno contra el otro
(10) Esto
fue acompañado por cambios en la dinámica de la enzima que transmiten el efecto
de la mutación al centro catalítico. De hecho, el reemplazo
de Thr 285 Ala observado en el SARS-CoV-2 M pro también permite que los dos dominios III se
acerquen un poco más cerca (la distancia entre los átomos de Cα de los residuos
285 en las moléculas A y B es de 6.77 Å en el SARS -CoV M pro y 5.21 Å en SARS-CoV-2 M pro y la distancia entre los centros de masa de los
dos dominios III se reduce de 33.4 Å a 32.1 Å). Sin embargo, la eficiencia
catalítica del SARS-CoV-2 M pro es solo
un poco más alta, en todo caso ( k cat / K m = 3426.1 ± 416.9 s −1 M−1) que el del SARS-CoV M pro ( k cat / K m =
3011.3 ± 294.6 s −1 M −1 ). Además,
el estimado K d de
la disociación del dímero es el mismo (~ 2,5 M) para las dos enzimas, tal como
se determina por ultracentrifugación analítica (fig. S8).
![](https://blogger.googleusercontent.com/img/b/R29vZ2xl/AVvXsEibFWGy-LTWLb3EHuwMVh7zYK1f7ZqhCBCIvIRP9myr-qtvak4c4vhbEAh9BPtna7C34qnuyjFmnRP2ylzMIp-2r_7kWNeSDm076M5XAD_RIsqGGk-JDIml7CkY_HUF01aE4qMxwRRopZzP/s640/Estructura+coronavirus+2.jpg) |
Fig. 2 Estructura tridimensional del SARS-CoV-2 M pro, en dos vistas diferentes.
Un
protómero del dímero se muestra en azul claro, el otro en naranja. Los
dominios están etiquetados por números romanos. Los residuos de
aminoácidos del sitio catalítico se indican como esferas amarillas y azules,
para Cys 145 y
His 41,
respectivamente. (Un asterisco marca un residuo del protómero B (naranja)). Las
esferas negras indican las posiciones de Ala 285 de
cada uno de los dos dominios III (ver texto). Los términos de la cadena
están etiquetados como N y C para la molécula A (azul claro) y N * y C * para
la molécula B (naranja).
|
Utilizamos esta estructura
cristalina para acoplar la α-cetoamida 13a; Esto sugirió que el anillo de piridona podría
tener algún choque estérico con la cadena lateral de Gln189. Sin embargo,
en nuestro trabajo anterior ( 6 ),
encontramos que Gln189 era bastante flexible y, por lo tanto, seguimos adelante
con 13a como líder. La vida media plasmática de este compuesto en ratones
aumentó ~ 3 veces en comparación con 11r (de 0.3 horas a 1.0 horas), la solubilidad
cinética plasmática in vitro mejoró en un factor de ~ 19 (de 6 μM por 11r a 112 μM para 13a) y la solubilidad termodinámica por un factor de ~ 13
(de 41 μM a 530 μM). La unión a la proteína plasmática del ratón se redujo
del 99% al 97% (muchos fármacos tienen una unión a la proteína plasmática>
90%; (11). Sin
embargo, en comparación con 11r (IC 50 = 0.18 ± 0.02 μM), la modificación estructural
condujo a cierta pérdida de actividad inhibitoria contra la proteasa principal
de SARS-CoV-2 (IC 50 = 2.39 ± 0.63 μM)
así como las proteasas 3C (3C pro) de
enterovirus. 11r fue diseñado para una actividad de amplio espectro, con
el resto ciclohexilo P2 destinado a llenar un bolsillo en el enterovirus
3C pro. El bolsillo S2 del betacoronavirus M pro (ver Fig. 3) presenta una plasticidad sustancial que le permite
adaptarse a la forma de restos inhibidores más pequeños ( 6 ). Para
mejorar la actividad antiviral contra los betacoronavirus del clado b (SARS-CoV-2
y SARS-CoV), sacrificamos el objetivo de la actividad de amplio espectro y
reemplazamos el resto ciclohexilo P2 de 13a por el ciclopropilo más pequeño en 13b ( Fig. 1, círculos azules). Aquí presentamos estructuras
cristalinas de rayos X en dos formas cristalinas diferentes, a una resolución
de 1.95 y 2.20 Å, del complejo entre la α-cetoamida 13b y el M pro de
SARS-CoV-2 ( Fig. 3 ). Una estructura está en el grupo
espacial C 2,
donde ambos protómeros del M pro los dímeros
están unidos por la simetría de cristal para tener conformaciones idénticas, el
otro está en el grupo espacial P 2 1 2 1 2 1 , donde
los dos protómeros son independientes entre sí y libres para adoptar
conformaciones diferentes. De hecho, encontramos que en la última
estructura cristalina, el residuo clave Glu 166 adopta una conformación inactiva en el protómero
B (como lo demuestra su distancia de His 172 y la falta de interacción de unión H con el
resto P1 del inhibidor), incluso aunque el compuesto 13b está unido en el mismo modo que en la molécula
A. Este fenómeno también se ha observado con el SARS-CoV M pro (12))
y es consistente con la actividad de medio sitio descrita para esta enzima (13). En
todas las copias del SARS-CoV-2 M proinhibido, el
inhibidor se une al sitio de unión de sustrato poco profundo en la superficie
de cada protómero, entre los dominios I y II ( Fig. 3).
![](https://blogger.googleusercontent.com/img/b/R29vZ2xl/AVvXsEinmPDPtTnrml6W9edp1PmRa1X5ibKzu8hX1ft0iTGTMDPgX76GpYuaSsFkZdhlbjA3-wAI50A9FKiwsLIruc_k4gMatoozLpb2rlEuWhK83lSAjJL1htTMkRzRHxtRvULHv1qAvPagBct9/s400/Coronavirus+fig.+3.jpg) |
Fig. 3 Compuesto 13b en la hendidura de unión al sustrato ubicada entre los dominios I y II del M pro , en forma de cristal monoclínico (grupo espacial C 2). |
Se muestra la densidad F o -F c para
el inhibidor (nivel de contorno: 3σ). Los átomos de carbono del inhibidor
son magenta, excepto en el anillo de piridona, que es negro; los átomos de
oxígeno son rojos, azul de nitrógenos y amarillo de azufre. Los símbolos
azul claro S1, S2, S3, S4 indican los bolsillos de unión canónica para los
restos P1, P2, P3, P4 (símbolos rojos) del inhibidor peptidomimético. Los
enlaces de hidrógeno se indican con líneas rojas discontinuas. Tenga en
cuenta la interacción entre el residuo N-terminal de la cadena B, Ser 1 * y Glu 166de
la cadena A, que es esencial para mantener el bolsillo S1 en la forma correcta
y la enzima en la conformación activa. Recuadro: tiohemiketal formado por
el ataque nucleofílico de la cisteína catalítica sobre el carbono α del
inhibidor en su Fo -F c densidad (contorneada a 3σ). La
estereoquímica de la α-carbono es S . Ver fig. S8
para más detalles.
A través del ataque nucleófilo del catalizador Cys
145 sobre el grupo α-ceto del
inhibidor, se forma un tiohemiketal en una reacción reversible. Esto se
refleja claramente en la densidad de electrones (
Fig. 3 recuadro); La
estereoquímica de este resto quiral es
S en todas las copias del compuesto
13b en estas
estructuras. El grupo oxianión (o hidroxilo) de este tiohemiketal está
estabilizado por un enlace de hidrógeno de His
41 , mientras que el oxígeno amida
de
13b acepta
un enlace de hidrógeno de las amidas de la cadena principal de Gly
143 , Cys
145 y en parte Ser
144, que forman el "agujero de
oxianión" canónico de la cisteína proteasa. Es una ventaja de las
α-cetoamidas que su ojiva puede interactuar con el centro catalítico de las
proteasas objetivo a través de dos interacciones de enlace de hidrógeno (
6 ), en lugar de solo una como con otras ojivas
como los aldehídos (
14 ) o los aceptores de Michael (
15). )
.
El resto P1 γ-lactama, diseñado como un sustituto de
glutamina (
15 ,
16 ), está profundamente incrustado en el
bolsillo S1 de la proteasa, donde el nitrógeno de la lactama dona un enlace de
hidrógeno de tres centros (bifurcado) al oxígeno de la cadena principal de
Phe
140 (3.20 / 3.10
/ 3.28 Å; valores para la estructura en el grupo espacial
C 2 / grupo
espacial
P 2
1 2
1 2
1 molécula
A / grupo espacial
P 2
1 2
1 2
1 molécula B) y para
el carboxilato Glu
166 (3.35
/ 3.33 / (3.55) Å), y el oxígeno carbonílico acepta un enlace H 2.57 / 2.51 /
2.81-Å del imidazol de His
163. Los
P2 ciclopropilo ajustes de restos metilo perfectamente en el subsitio S2, que
se ha reducido en 28 Å
3en
comparación con el complejo entre el compuesto
13a con P2 =
ciclohexilo metilo y el SARS-CoV M
pro (
17 ). La piridona en la posición P3 - P2
del inhibidor ocupa el espacio normalmente ocupado por la cadena principal del
sustrato, su oxígeno carbonílico acepta un enlace de hidrógeno 2.89 / 2.99 /
3.00-Å de la amida de la cadena principal del residuo Glu
166. Además, la amida P3 dona un
enlace H 2.83 / 2.96 / 2.87-Å al oxígeno de la cadena principal de Glu
166. Incrustado dentro de la
piridona, el nitrógeno P2 ya no puede donar un enlace de hidrógeno a la
proteína (el enlace H impedido de formar conectaría el nitrógeno P2 y el
oxígeno de la cadena lateral de Gln189; estos dos átomos se destacan en la
figura S8) . Sin embargo, nuestras estructuras cristalinas anteriores
mostraron que la amida de cadena principal P2 de las α-cetoamidas lineales no
forma un enlace de hidrógeno con la proteína en todos los casos, por lo que
esta interacción no parece ser crítica (
6 ). El grupo protector Boc en P3 no ocupa
el sitio canónico S4 de la proteasa (en contraste con los grupos protectores de
otros inhibidores en complejo con el SARS-CoV M
pro (
18), pero está ubicado cerca de Pro
168 (3.81 / 4.17 / 3.65 Å;
Fig.3); Debido
a esta interacción, el último residuo se mueve hacia afuera en más de 2 Å (en
comparación con la estructura de la enzima libre). Este contacto explica
por qué eliminar el grupo Boc como en el compuesto
14b (
Fig. 1, círculos
morados) debilita la potencia inhibitoria de este compuesto por un factor de
aproximadamente 2. Curiosamente, hay un espacio entre el anillo de piridona
de
13b,
la cadena principal del residuo Thr
190,
y la cadena lateral de Gln
189 (distancia
más pequeña: 3.6 Å) que se llena con una molécula DMSO en la estructura
cristalina
C 2 y una molécula de agua en el
P 2
1 2
1 2
1estructura. Esto
sugiere que los restos P3 más voluminosos que la piridona pueden aceptarse
aquí.
El compuesto
13b inhibe el SARS-CoV-2 M
pro recombinante purificado con
IC
50 = 0,67 ± 0,18
μM. Los valores de IC
50 correspondientes para
la inhibición del SARS-CoV M
pro y
el MERS-CoV M
proson 0.90
± 0.29 μM y 0.58 ± 0.22 μM, respectivamente. En un replicón de SARS-CoV
(
19 ), la replicación de ARN se inhibe con
CE
50 = 1.75 ± 0.25
μM. En las células Calu3 humanas infectadas con el nuevo coronavirus,
SARS-CoV-2, se observa una CE
50 de
4 - 5 μM, mientras que el compuesto
14b que carece del grupo Boc está casi
inactivo (
Fig. 4) Esto
sugiere que el grupo Boc hidrofóbico y voluminoso es necesario para cruzar la
membrana celular y que un resto aún más hidrofóbico podría ser ventajoso aquí,
aunque esto puede conducir nuevamente a una mayor unión a proteínas plasmáticas
como se observa para el
11r que contiene cinamoilo.
![](https://blogger.googleusercontent.com/img/b/R29vZ2xl/AVvXsEgNRclhi7CIFKEmVK5WNdlHfzJ9ATmZBhEdxqOf-FnwJq4bSDdFq7B0fCgR35TnbjqAs1BL73BA3vl-n6b0AVys19oiyvW34G9UDxQdMA6DMgtKnoi9fWpg8_gCaKaYlJ7fvviAHnt6rp_I/s640/Coronavirus+fig.+4.jpg) |
Fig. 4 El compuesto 13b inhibe la replicación del SARS-CoV-2 en células pulmonares Calu3 humanas. |
(A)
Las células Calu-3 se infectaron con SARS-CoV-2 usando un MOI de 0.05 y se
estimularon con DMSO (barra negra) o diferentes cantidades (5, 10, 20 o 40 μM)
de 13b (barras
azules) o 14b (barras
naranjas) y analizadas a las 24 horas pi. En (A), se aisló el ARN total de
los lisados celulares y se analizó el contenido de ARN viral mediante
qPCR. (B)
Para la estimación del valor de CE 50 del compuesto 13bfrente al SARS-CoV-2, se
preparó una curva dosis-respuesta (GraphPad). (A) representa las medias ±
DE de dos experimentos biológicos con dos réplicas técnicas cada uno.
Para evaluar las propiedades
de absorción - distribución - metabolismo - excreción (ADME) de las
α-cetoamidas que contienen piridona, primero investigamos el compuesto 13a. La estabilidad metabólica en microsomas humanos
y de ratón fue buena, con tasas de aclaramiento intrínsecas Cl int_mouse = 32.0 μL / min / mg de proteína y Cl int_human = 21.0 μL / min / mg de proteína. Esto
significa que después de 30 minutos, alrededor del 80% para ratones y 60% para
humanos, respectivamente, del compuesto residual se mantuvo metabólicamente
estable. Los estudios farmacocinéticos en ratones CD-1 que utilizan la
ruta subcutánea a 20 mg / kg mostraron que 13ª permaneció en el plasma durante solo 4 horas, pero se
excretó a través de la orina durante hasta 24 horas. La C max se determinó a 334,5 ng / ml y el tiempo medio de
residencia fue de aproximadamente 1,6 horas. Aunque 13a parecía eliminarse muy rápidamente del plasma, se
encontró a las 24 horas a 135 ng / g de tejido en el pulmón y a 52,7 ng / ml en
fluido de lavado broncoalveolar (BALF), lo que sugiere que se distribuyó
principalmente al tejido. A continuación, investigamos 13b por sus propiedades farmacocinéticas en ratones
CD-1 utilizando también la ruta subcutánea, pero a 3 mg / kg. Los
parámetros ADME de 13b fueron similares a 13a; Además, se encontró que la unión a las
proteínas plasmáticas humanas era del 90%. La C max de 13b se determinó a 126,2 ng / ml. Esto es alrededor
del 37% de la C max detectada para 13a, aunque la dosis de 13b fue aproximadamente 7 veces menor. El
tiempo medio de residencia para 13b se extendió a 2,7 horas y la vida media
plasmática en ratones fue de 1,8 horas. Además, 13b mostró un aclaramiento menos rápido en
comparación con 13a (tabla S3). Durante el estudio farmacocinético con 13b, monitoreamos sus niveles de tejido
pulmonar. Después de 4 horas, todavía se encontraron alrededor
de 13 ng / g de 13b en el tejido pulmonar. Este tropismo pulmonar de 13a y 13b es beneficioso dado que COVID-19 afecta los
pulmones. Además de la administración subcutánea, 13b se nebulizó usando un dispositivo de inhalación
a 3 mg / kg. Después de 24 horas, 33 ng / g 13b fueron encontrados en el tejido pulmonar. La
inhalación fue bien tolerada y los ratones no mostraron ningún efecto adverso,
lo que sugiere que de esta manera, sería posible la administración directa del
compuesto a los pulmones. Dados estos resultados farmacocinéticos
favorables, nuestro estudio proporciona un marco útil para el desarrollo de los
inhibidores que contienen piridona hacia los fármacos anticoronavirales.
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Agradecimientos: Los autores agradecen a Yuri Kusov y Guido
Hansen, así como a Aws Aljnabi por determinar las actividades inhibidoras de
los compuestos en un replicón SARS-CoV y contra MERS-CoV M pro recombinante , respectivamente, y a
Thorsten Biet por registrar 13 C
NMR espectros Agradecemos a Andrea Ahlers, Janine Schreiber y Lidia Litz
por su excelente asistencia técnica, Kuilan Chen por su continuo apoyo
organizativo y al personal de la línea de luz 14.2 de BESSY II, Berlín,
Alemania, por su ayuda con la recopilación de datos de difracción. Financiación:
Agradecemos al Centro Alemán de Investigación de Infecciones (DZIF) por su
apoyo financiero (proyectos TTU01, subvención # 8011801806, y TTU09, subvención
# 8004709710). Contribuciones de autor: Conceptualización: LLZ,
DZL, RH; Investigación: LLZ, DZL, XYYS, UC, LS, SB, KR,
RH; Contribución de materiales de investigación: CD; Redacción -
preparación del borrador original: RH, DZL, KR; Redacción - revisión y
edición: LLZ, DZL, UC, LS, KR, RH; Visualización: LLZ, LS; Supervisión:
RH; Adquisición de fondos: RH, SB, KR; Conflicto de intereses: la
Universidad de Lübeck ha presentado una solicitud de patente que cubre los
compuestos 13a y 13b , así como los
compuestos relacionados con una estructura de piridona en la posición P3 - P2,
con LLZ, DZL y RH como inventores. Disponibilidad de datos y
materiales: las coordenadas cristalográficas y los factores de
estructura están disponibles en el PDB con los códigos de acceso 6Y2E (M pro sin control), 6Y2F (complejo con13b en el grupo
espacial C 2) y 6Y2G (complejo con 13b en el
grupo espacial P 2 1 2 1 2 1 ). El
plásmido que codifica el SARS-CoV-2 M pro estará
disponible gratuitamente. Las cantidades disponibles de inhibidores son
limitadas.